高压灭菌后的枪头 离心管等可以保持多久 怎么保存_百度知道
高压灭菌后的枪头 离心管等可以保持多久 怎么保存
普通PCR加样用的。打开用过后的枪头还能下次再用吗。请教高压灭菌后的枪头可以放多久啊。是不是要裹上报纸才能保存比较久的
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们都是单买的枪头盒插好枪头，高压灭菌后60度烘干过夜。使用的时候直接拿一盒放实验台上用就是了，打开后一次没有用完可以下次接着用
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谢谢的。也感谢其他几位朋友
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一般我们是用盒子包上报纸灭菌
要是时间长久的话 就要密封好的包装了
博凌科为-为你解答：不可以，因为DEPC是一种强烈但不彻底的RNA酶抑制剂。高压两次是无法除去RNA酶的是在嫌麻烦，可以买一些滤芯枪头，无需处理，
用报纸包裹的可以放两个月左右没问题，打开过的最好在重新灭一下
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出门在外也不愁请问：用Trizo提取RNA，是否也有DNA呢？(离心管|上清)
01:13:49&&&来源：&&&评论：&&
[请问：用Trizo提取RNA，是否也有DNA呢？(离心管|上清)] 用TRIzo提取RNA操作应该如下：1.1 在1.5ml的eppendorf管中加入病毒原液500ul，再加入TRIzol LS 500ul，充分混匀，室温放置10min。1.2 加入200ul的氯仿，盖紧离心管盖，用力震荡离心管，室温放置10min （由于氯仿沸点低、易挥发，振荡时离心管可能爆开，小心）。1.3 离心 4℃、13000r/min、15min，取上层液相移入另一管（切忌吸动白色中间 关键词:[离心管 上清 氯仿 病毒 等体积 RT-PCR 试剂]…
用TRIzo提取RNA操作应该如下：1.1 在1.5ml的eppendorf管中加入病毒原液500ul，再加入TRIzol LS 500ul，充分混匀，室温放置10min。1.2 加入200ul的氯仿，盖紧离心管盖，用力震荡离心管，室温放置10min （由于氯仿沸点低、易挥发，振荡时离心管可能爆开，小心）。1.3 离心 4℃、13000r/min、15min，取上层液相移入另一管（切忌吸动白色中间相）。1.4 加入等体积异丙醇，轻轻颠倒离心管充分混匀液体，室温放置10min。1.5 离心 4℃、13000r/min、15min，（这时乍一看会发现管子里好像没有东西，再仔细看看，会发现靠近管底的壁上有一星点的白色沉淀物，就是它了）用枪小心吸去所有上清。1.6 1ml75%乙醇洗一遍，离心 4℃、8000r/min、10min，用枪小心吸去所有上清，在超净台中干燥5min。1.7 加入适量DEPC处理水。（如果材料来源丰富的话，加入的水量为下一步RT的total减去其他的量；若要省着点用，则自己看着办了，尽量不要加太多的水）。1.8 建议立即做RT。若要保存，可在上一步加入乙醇后冻存于－70℃，可保存一年；若加入DEPC水后则只能在－20℃保存1个月左右。不知道，样品中的DNA是在那一步中被去除的？难道TRIzo可以降解RNA吗?如果里面含有DNA，那怎么能确定RT-PCR产物是从mRNA扩增出来的、而不是从DNA上扩增出来的呢？谢谢!!
回复:加入氯仿，混匀，离心后 分为三层，最下面的有机层中含有DNA，最上面的水样层是RNA回复:加入氯仿，混匀，离心后 分为三层，最下面的有机层中含有DNA，最上面的水样层是RNADNA是通过氯仿抽提去除的，所以吸取上层水相时宁少勿多。Trizol并不能降解DNA，能保护RNA不被RNA酶降解，还能使蛋白质变性。提取的RNA可通过糖电泳检测完整性（三条带），如果RNA中含有也可在此胶上看到。RNA中都有痕量，可通过分光光度检测RNA质量，A260/A280接近2.0即可用以反转录（此时的痕量DNA不影响反转录）。如果DNA量大，可用DNase
I消化后反转录。回复:谢谢两位.加入氯仿，混匀，离心后 分为三层，最下面的有机层中含有DNA，最上面的水样层是RNA但我还是不明白,到底DNA是在下层的有机层中,还是在上面水相的底层呢?DNA能溶于有机相吗?谢谢!!回复:DNA是通过氯仿抽提去除的，DNA位于下面的有机相中做RT-PCR时，设立一组无逆转录酶的阴性对照，如果阴性对照无目的条带，则证明RT-PCR产物是从mRNA扩增出来的、而不是从DNA上扩增出来的申请加分回复:我觉得TRIZOL法得到的RNA里面很容易有DNA污染的。个人建议还是加DNase再处理一下回复:我觉得TRIZOL法得到的RNA里面很容易有DNA污染的。个人建议还是加DNase再处理一下回复:是的，会有的，提取时下面一层是DNA，上面的必然有少量的DNA，因此还是得用DNA酶处理一下。回复:学习中！平时虽然知道怎么做和如何避免干扰，但是理论方面的知识可以说很少复习，谢谢各位指教！回复:对啊，我提取RNA时也是宁少勿多，宁缺勿滥的
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millipore超滤离心管想重复使用，请问如何清洗和保存？
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秀基因 个 秀蛋白 个
最近使用超滤管，由于管子较贵，想重复用几次，但找不到可靠的资料。不知如何清洗和保存，比如有人说用叠氮化钠，有人说用氢氧化钠，有人说用乙醇浸泡。莫衷一是。很急用！望秀友们多多帮助，谢谢！
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秀基因 个 秀蛋白 个
有专门的清洗millipore的粉剂啊，进口的，我们实验室都用这个，不过 用了好几年了。millipore该清洗的时候上面有灯会变成黄色闪动，等你清洗完之后就会变好了。不过清洗的时间要用好几个小时，而且需要大量的单蒸水。我们的柱子有了好几年了，就这样保养，现在还是可以用的！
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秀基因 个 秀蛋白 个
我们实验室是用0.1mol/L的氢氧化钠浸泡半小时，然后再用双蒸水浸泡清洗。
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秀基因 个 秀蛋白 个
氢氧化钠清洗，保存加点叠氮钠抑菌
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秀基因 个 秀蛋白 个
imxiaoqiao
谢谢！我的只是那种15ml的超滤管。目前我是用20%的乙醇泡着的。呵呵
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秀基因 个 秀蛋白 个
我以前用的是millipore的超滤管，因为每次都是超滤同样的样品，所以重复使用，每次用完都是在95%的乙醇中浸泡，4度保存，效果可以，没问题。现在工作了条件好很多，用的是sartoris的，几乎不重复使用，但我个人觉得用碱泡的话对膜应该有一定的损害，不过没试过！
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秀基因 个 秀蛋白 个
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秀基因 个 秀蛋白 个
我们的是用0.1M NaOH浸泡后，在水洗，然后在20%乙醇中保存的
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秀基因 个 秀蛋白 个
我以后也用
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秀基因 个 秀蛋白 个
谢谢，我以前就直接用mini-q水冲洗，再用20%乙醇保存，效果也还可以。80-1 或者80-2离心机用的的离心管是哪种型号呢？我用卡尺测量孔径是21.x毫米，不知该买那种离心管thanks_百度知道
80-1 或者80-2离心机用的的离心管是哪种型号呢？我用卡尺测量孔径是21.x毫米，不知该买那种离心管thanks
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是离心机，还是载离心管的那个管套呢？
管套. thanks
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