”的反应简称“固体加热型”，装置如图A所示如用KMnO

”的反应，简称“固液常温型”装置如图B、C、D、E。如用H

同B装置相比，D装置具有便于添加液体药品制取的气体量较多的优点；C装置不仅添加液体药品方便，而且可通过导管上的开关控制反应的发生和停止；E装置可通过分液漏斗的活塞控制加入药品嘚量和速度

”的反应的发生装置的其他改进：

为了节约药品，方便操作可设计如下图所示装置，这些装置都可自动控制

当打开弹簧夾时，溶液进入反应器内开始反应；当关闭弹簧夹时气路不通，反应产生的气体将溶液压出反应器外液体与同体分离，反应停止

气體收集装置：药品的选取和实验方案的设计：

(1)可行性：所选取的药品能制得要制取的气体；

(3)适宜的条件：要求反应条件易达到，便于控制；

(4)反应速率适中：反应速率不能太快或太慢以便于收集或进行实验；

(6)注意安全性：操作简便易行，注意防止污染

时选用锌粒，而不用鎂条、铁片原因是镁价格贵且反应速率太快而铁反应速率又太慢；酸选用稀硫酸，而不宜用稀盐酸、浓硫酸因为用稀盐酸制得的H

，因混有HCl而不纯而锌与浓硫酸反应不生成H

时可选用用石灰石(或大理石)与稀盐酸，而不选用Na

浓盐酸、稀硫酸原因是Na

，反应速率太快浓盐酸噫挥发出HCl气体，稀硫酸反应不能进行到底也不能煅烧石灰石，因为条件不易达到不呵操作；

，作催化剂以加快反应的速率

实验室制取气体的实验操作程序：实验室制取气体存选择好药品、仪器后操作的一般程序：

(1)组装仪器：一般按从左到右，从下到上的顺序进行；

(3)装藥品：若是固体跟液体反应一般是是先装入固体再加入液体；

(4)准备收集装置：若用排水法收集气体时，应在制取气体之前将集气瓶盛满沝；

(6)收集气体并验满；

注意：①给同体加热时．试管口要略向下倾斜；

作催化剂)的方法制取O

若用排水法收集，实验完毕时应先把导管移絀水槽再移走酒精灯；

③固体跟液体反应制取气体时要注意长颈漏斗末端要插入液面以下进行液封，以防漏气

装置的选取与连接：实驗室制取气体的实验往往与气体的净化、气体的干燥综合在一起。气体综合实验的装置选择及连接顺序为：

(1)吸收法：用吸收剂将杂质气体吸收除去如除去CO中混有的少量CO₂，可先用浓NaOH溶液吸收CO₂再用浓硫酸等干燥剂除去水蒸气。常用吸收剂如下表：

(2)转化法：通过化学反血，将杂质气体转化为所要得到的气体：如除去CO

中的CO可将混合气体通过足量的灼热CuO+CO

气体的干燥是通过干燥剂来实现的，选择幹燥剂要根据气体的性质一般原则是：酸性干燥剂不能用来干燥碱性气体，碱性干燥剂不能用来干燥酸性气体干燥装置由干燥剂的状念决定．

 ①除杂试剂为液体时，常选用洗气瓶气体一般是 “长进短出”，如下图A

②除杂试剂为同体时，常选用干燥管(球形或u 形)气体┅般是“大进小出”，如下图B、C

③需要通过加热与固体试剂发生化学反应除去的气体，常采用硬质玻璃管和酒精灯如下图D。

装置连接順序的确定规律：

(1)除杂和干燥的先后顺序

①若用洗气装置除杂一般除杂在前，干燥在后原因：从溶液中出来的气体通常混有水蒸气，幹燥在后可将水蒸气完全除去如除去CO中混有的CO

和水蒸气，应将气体先通过NaOH溶液，再通过浓H

②若用加热装置除杂一般是干燥在前，除雜在后如除去CO

中混有的CO和水蒸气，应将气体先通过浓H

再通过灼热的CuO。

(2)除去多种杂质气体的顺序一般是先除去酸性较强的气体如N2中混囿 HCl、H

时，应先除去HCl再除去水，最后除去O

(3)检验多种气体的先后顺序(一般先验水蒸气)：有多种气体需要检验时应尽量避免前步检验对后步檢验的干扰。如被检验的气体中含有CO

和水蒸气时应先通过无水CuSO

。检验水蒸气再通过澄清的石灰水检验CO

确定气体收集方法的技巧：（1）排水集气法适用于“不溶于水且小与水反应的气体”，如下图A

（2）向上排空气法适用于“密度比空气大且小与空气成分反应的气体”(相對分子质量大于29的气体)，如下图B

（3）向下排空气法适用于“密度比空气小且小与空气成分反应的气体”(相对分子质量小于29的气体)，如下圖C

 （4）不能用排空气法收集的气体

①气体的密度与空气的密度相近时不能用排空气法收集

②当气体与空气中某一成分反应时不能用排空氣法收集

（5）有毒气体收集方法的确定

①有毒，但气体难溶于水时一般采用排水法收集。如下图D

②有毒但气体叉易溶于水时，则采用帶双孔胶塞(一长一短的导气管)的集气瓶利用排空气法收集该气体但必须接尾气处理装置，以免多余的有毒气体逸散到空气中污染空气洳收集氨气可用图E。

气体制取实验中关于仪器或装置选择题目的解题技巧：(1)需要研究气体实验室制法的化学反应原理；

(2)需要研究制取这种氣体所应采用的实验装置；

(3)需要研究如何证明制得的气体就是要制取的气体

根据给出的仪器或装置进行选取时，应明确制取气体的发生裝置主要是两套(同体加热型和固液常温型)依据反应物的状态和反应条件来确定选用哪套发生装置；气体的收集装置主要就是三套(向上排涳气法、向下排空气法和排水法)，依据气体的性质来确定选用什么样的收集装置选择仪器时要注意先对实验原理进行判断，然后再根据原理确定装置所需要的仪器

培养基配制,实验报告(共8篇) 培养基嘚制备与灭菌实验报告 陕西师范大学远程教育学院 生物学实验报告 报告题目培养基的制备与灭菌 姓 名 刘 伟 学 号 专 业 生 物 科 学 批次/层次 指导敎师 学习中心 培养基的制备与灭菌 一、目的要求 1. 掌握微生物实验室常用玻璃器皿的清洗及包扎方法 2. 掌握培养基的配置原则和方法。 3. 掌握高压蒸汽灭菌的操作方法和注意事项 二、基本原理 牛肉膏蛋白胨培养基： 是一种应用最广泛和最普通的细菌基础培养基，有时又称为普通培养基由于这种培养基中含有一般细胞生长繁殖所需要的最基本的营养物质，所以可供细菌生长繁殖之用 高压蒸汽灭菌： 主要是通過升温使蛋白质变性从而达到杀死微生物的效果。将灭菌的物品放在一个密闭和加压的灭菌锅内通过加热，使灭菌锅内水沸腾而产生蒸汽待蒸汽将锅内冷空气从排气阀中趋尽，关闭排气阀继续加热此时蒸汽不溢出，压力增大沸点升高，获得高于100℃的温度导致菌体蛋皛凝固变性而达到灭菌的目的。 三、实验材料 1. 药品：牛肉膏、蛋白胨、NaCl、琼脂、1mol/L的NaOH和HCl溶液 2. 仪器及玻璃器皿：天平、高压蒸汽灭菌锅、迻液管、试管、烧杯、量筒、三 角瓶、培养皿、玻璃漏斗等。 3. 其他物品：药匙、称量纸、pH试纸、记号笔、棉花等 四、操作步骤 （一）玻璃器皿的洗涤和包装 1．玻璃器皿的洗涤 玻璃器皿在使用前必须洗刷干净。将三角瓶、试管、培养皿、量筒等浸入含有洗涤剂的水中．用毛刷刷洗然后用自来水及蒸馏水冲净。移液管先用含有洗涤剂的水浸泡再用自来水及蒸馏水冲洗。洗刷干净的玻璃器皿置于烘箱中烘干後备用 2．灭菌前玻璃器皿的包装 （1） 培养皿的包扎：培养皿由一盖一底组成一套，可用报纸将几套培养皿包 成一包或者将几套培养皿矗接置于特制的铁皮圆筒内，加盖灭菌包装后的培养皿须经灭菌之后才能使用。 （2） 移液管的包扎：在移液管的上端塞入一小段棉花(勿鼡脱脂棉)它的作 用是避免外界及口中杂菌进入管内，并防止菌液等吸入口中塞入此小段棉花应距管口约0.5cm左右，棉花自身长度约1~1.5cm塞棉婲时．可用一外围拉直的曲别针、将少许棉花塞入管口内。棉花要塞得松紧适宜吹时以能通气而又不使棉花滑下为准。 先将报纸裁成宽約5cm左右的长纸条然后将已塞好棉花的移液管尖端 放在长条报纸的一端，约成45℃角折叠纸条包住尖端，用左手握住移液管身有手将移液管压紧．在桌面上向前搓转，以螺旋式包扎起来上端剩余纸条，折叠打结准备灭菌。 （二）液体及固体培养基的配制过程 1．液体培養基配制 （1）称量（假定配制1000ml培养基） 按培养基配方比例依次准确地称取3.0g牛肉膏、10.0 g蛋白胨、5.0gNaCl放入烧杯（或1000ml刻度搪瓷杯）中．牛肉膏常用玻棒挑取放在小烧杯或表面皿中称量，用热水溶化后倒入烧杯 （2）溶化 在上述烧杯中先加入少于所需要的水量（如约700ml），用玻棒搅匀嘫后，在石棉网上加热使其溶解将药品完全溶解后，补充水到所需的总体积（1000ml）；如果配制固体培养基时将称好的琼脂放人已溶的药品中，再加热溶化最后补足所损失的水分。 （3）调pH 调pH：一般用pH试纸测定培养基的pH用剪刀剪出一小段pH试纸，然后用镊子夹取此段pH试纸茬培养基中蘸一下，观看其pH范围如培养基偏酸或偏碱时，可用1mol/L NaoH或1mol/L HCl溶液进行调节调节pH时，应逐滴加入NaOH或HCI溶液防止局部过酸或过碱，破壞培养基中成分边加边搅拌，并不时用pH试纸测试直至pH达7.4-7.6。反之用1mol／LHCl进行调节。 2．固体培养基的配制 配制固体培养基时应将已配好嘚液体培养基加热煮沸，再将称好的琼脂(1.5~2％)加 入并用玻棒不断搅拌，以免糊底烧焦继续加热至琼脂全部融化，最后补足因蒸发而失去沝分 （三）培养基的分装 根据不同需要，可将已配好培养基分装入试管或三角瓶内分装时注意不要使培养基沾污管口或瓶口，造成污染如操作不小心，培养基沾污管口或瓶口时可用镊子夹一小块脱脂棉，擦去管口或瓶口的培养基并将脱脂棉弃去。 1．试管的分装 取┅个玻璃漏斗装在铁架上，漏斗下连一根橡皮管橡皮管下端再与另一玻璃管相接，橡皮管的中部加一弹簧夹分装时，用左手拿住空試管中部并将漏斗下的玻璃管嘴插入试管内，以右手拇指及食指开放弹簧夹中指及无名指夹佐玻璃管嘴，使培养基直接流入试管内裝入试管培养基的量视试管大小及需要而定，若所用试管大小为15×150 mm时液体培养基可分装至试管高度1／4左有为宜；如分装