250mMCacl2如何配置

欲配制1mol/L的cacl2溶液怎么办_百度知道
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取1000mL的容量瓶,那么就用天平称量11.1gCaCl2固体,倒入烧杯加水溶解,将溶液倒入容量瓶并用蒸馏水润洗2-3次,润洗液一并倒入容量瓶,再向容量瓶里加蒸馏水至刻度为止,最后塞紧玻璃塞并摇匀即可。
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制备和转化感受态大肠杆菌的Inoue方法总结:
Inoue 法制备感受态大肠杆菌总结1. 培养基的准备 . SOB 培养基: 100ml 培养基: 胰化蛋白胨 酵母提取物 NaCl 250mM KCl 高压灭菌 使用前加 2mol/L MgCl2 0.5 ml 2 g 0.5 g0.05 g 1 mlSOB 琼脂板 琼脂板(含 20mmol/L MgSO4 和 20mmol/L 氨苄) 100ml 胰化蛋白胨 酵母提取物 NaCl 琼脂 250mM KCl 高压灭菌 再加 2mol/L 2mol/L 2 0.5 g g0.05 g 1.5 1 g ml50℃温浴 MgSO4 MgCl2 1 ml0.5 ml 100 ul20mg/ml 氨苄 混均倒平板(90mm2) SOC 培养液 50ml 胰化蛋白胨 酵母提取物 NaCl 250mM KCl 2mol/L MgCl2 1 g 0.25 g 0.025 g 0.5 ml 0.25ml 1 ml1mol/L 葡萄糖(0.22um 过滤除菌) 2. INOUE 转化缓冲液的准备:(250ml) 转化缓冲液的准备:MnCL2.4H2O CaCL2.2H2O KCL PIPES(0.5mol/L,PH6.7)2.72g 0.55g 4.6625g 5 ml 定容到 250ml0. 45μm 孔径滤膜过滤,分 50ml 每份―20℃保存 3. 挑取一个经 37℃培养 19h 平皿上的单菌落 . (2~3mm 直径)接种至 250ml 锥形瓶中的 25ml , SOB 培养液中,37℃摇床(250~300r/min)培养 6~8 小时。 此时培养物 OD600 约 0。680) (此时培养物 680) 。 ( 4. 从上述的 25ml 的初始培养物接 4ml 大肠杆菌于盛有 100ml SOB 的 500 ml 锥形瓶中, . 于 18~22℃中速摇床过夜。 次日取出达到 OD 值 0.55 时的培养液置于冰浴中 10min。 次日 5. 平均分装到两个 50ml 的贝克曼离心管于 4℃以 2500g 在贝克曼离心机上离心 10min 收 集菌体。 6. 倒去培养液,将离心管倒扣在吸水纸上 2min 以吸干剩余液体,用真空吸引器将贴附在 管壁的培养基吸干。 7. 加 32ml 冰预冷的 Inoue 转化缓冲液轻轻旋转重悬细菌(没有用枪吹吸和振荡重悬 没有用枪吹吸和振荡重悬) 没有用枪吹吸和振荡重悬 8. 于 4℃ 2500g 离心 10min 收集菌体。 10.倒去上层培养液,将离心管倒扣在吸水纸上 2min 以吸干剩余液体,用一真空吸引器将 附在管壁上的培养基吸干。 冻存感受态细胞 11.用 8ml 预冷的 Inoue 转化缓冲液轻轻重悬沉淀(此时两管混合于一管 此时两管混合于一管 此时两管混合于一管)。 12.向剩余的细胞中加 0.6mlDMSO DMSO,混匀冰浴 10min. DMSO 13.迅速将悬液分装到冷却的无菌 1.5ml 离心管中(每管 200ul ,没入液氮中快速冰冻感 每管 200ul) 受态细胞。贮存于-70℃备用。 转化 15.要转化的 PET 加入装有感受态细胞(加 DMSO 保存于-70℃的感受态细胞)的管中,轻轻 旋转几次混匀内容物。设一对照管:只有感受态细胞。冰浴 30min [保存于-70℃的感受态 保存于-70℃ 保存于 10min,然后再加 DNA.] 细胞从冰箱拿出后用手心溶解后立即在冰浴上冰浴 10min,然后再加 INSERT DNA. 16.将管放入预加温到 42℃的水浴中,恰恰放置 90s 不要摇动 不要摇动。 恰恰放置 90s,不要摇动 17.快速将管转移到冰浴中,使细胞冷却 1~2min。 18.每管加 800μl 在 37℃培养箱中温浴到 37℃的 SOC 培养基,然后将管转移到 37℃摇床 上,温育 45min(中速温和摇培 ,使细菌复苏并表达质粒编码的抗生素抗标记基因。 中速温和摇培) 中速温和摇培 19.将 200μl 体积的已转化的感受态细胞转移到含抗生素和 20mmol/L,MgSO4SOB 培养基上。 于 37℃培养箱正放到液体被吸收。 20.倒置平皿 12~16h 后可出现菌落。 转化 PET 标准质粒的结果如下图:图A转化 10μl 浓度为 50ng/μl 的 PET 标准质粒 图B转化 2μl 浓度为 50ng/μl 的 PET 标准质粒图 C 空白对照 分析: 仅与本人每次成功的经验为准,供参考) (仅与本人每次成功的经验为准 分析: 仅与本人每次成功的经验为准,供参考) ( 1、本实验所用的菌株是 XL1―BLEU ,注意不同种的大肠杆菌的各种参数不同。 2、培养基需新鲜配置,液体培养基的瓶子要专用,每次使用后洗净凉干后,锡铂纸封口, 使用前只用清水洗后蒸馏水荡几遍, 最后用超纯水润洗两遍。 注意专用器皿都不用任何清洁 剂,第一次使用时可以用稀的洗液浸泡。 3、 培养初始培养物的培养基可以用 SOB 或 LB, 其它步骤中所用各培养基均用 SOB (MgCl2 需在使前加) 。 4、大体积培养菌时如温度固定在 18~22℃,有如下细菌 OD600 的增长经验数值,多次记录时发 现增长的情况相近,以一次记录为例希望能为以后制作时带来一点方便: 时间 6:40 7:40 8:40 9:40 10:20 11:24 12:19 13:00 13:50 14:50 15:45 16:18 16:40 16:50 OD600 0.100 0.134 0.165 0.195 0.218 0.258 0.303 0.327 0.386 0.433 0.483 0.520 0.545 0.5535、实验中有两次重悬沉淀步骤中要注意,勿用枪头吹吸的方法,只需在加入缓冲液以后轻 轻悬转离心管就行了(轻重的标准是重悬时不会使里面的液滴飞溅) 。 6、感受态细胞有液氮速冻后于-70℃可以长期保存(半年内感受性不会下降,以后将再继续 延长观察期) 。 7、转化实验中最关键的是热激一步,温度,时间绝对准确性。还需要注意的是在热激过程 中离心管不能摇动,包括在取出离心管时都不能摇动,取出后立即放入冰浴中静置 2min。
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如何用 CaCl2 2H2O配制1M CaCl2溶液
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准确称取147g CaCl2 2H2O溶解于适量蒸馏水中,再用1L容量瓶定容即可
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CaCl2&#O 的摩尔质量为 147g/mol ,而CaCl2 的摩尔质量是111g/mol 。因为只相差结晶水质量,因此配1升 CaCl2(1mol/L) 需要147克CaCl2&#O ,溶于溶剂并稀释至一升即可。
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