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【求助】血浆总RNA提取问题
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这个帖子发布于3年零286天前，其中的信息可能已发生改变或有所发展。
最近在做血浆RNA提取的实验，发现了几个问题，求小伙伴们帮忙指导一下：1、当天早上从临床采集的全血血样（EDTA抗凝），一般会在常温放几个小时，有时候放在4度冰箱，然后中午再开始做RNA提取，血样这样放置会有影响吗？2、全血用4°C，3000rpm，离心10min，取上层血浆。取到上层血浆之后，需要到12000rpm离心之后再取一定量来做实验吗？3、提取方法是Trizol法，加Trizol、氯仿、异丙醇和75%乙醇这些常规步骤之后，晾干20min，加入25ul无核酶水，然后有必要在56°C孵育吗？4、每次提取的血浆总RNA，OD都是1.1-1.5，浓度值都在10 ng/ul左右，甚至更低（丧心病狂T_T），是RNA降解了吗？
怎样操作会比较好？
提取的RNA是用来做逆转录和RT-PCR的，检测miRNA的表达。之前做的PCR结果都还可以，但是OD和Con.太低了，有影响吗？谢谢各位！
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不知道楼上各位，RNA提取出来是用什么方法做定量的？是OD法还是荧光法？我用试剂盒am1556、和 miRNeasy Serum/Plasma kit 都试过提1ml血浆和血清的total RNA和miRNA用荧光法（Qubit 2.0） 全部定不出量。血浆里RNA含量应该非常少，楼上有同学定出了100-200 ng/ul肯定是不对的，应该杂质非常多。说不清楚会对下游实验造成致命影响。
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5、提取好的RNA样品怎样保存？放到-80°C吗？如果是，一般可以保存多久？
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1、mRNA稳定性较差，常温放置很容易降解，具体降解程度还需要实验检测；2、需要两次离心；3、不需要孵育；4、OD值只是质控的一个指标，如果RT能成功当然无所谓，怕的是OD不合格会影响RT，所以可以考虑先过柱纯化后继续往下做；5、-80保存，跟第一个问题一样，肯定也是新鲜最好，久放毕竟会有一定程度的降解。
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关于丁香园RNA提取步骤改良
RNA的提取准备试剂：氯仿，异丙醇，75℅乙醇，无RNase的水或0.5℅SDS(溶液均需用DEPC处理过的水配制)
脏器中提取RNA时，对于样品的品质要求很高，鲜样取出后应用DEPC水浸泡或者RNA保存液浸泡后迅速置于液氮中或者-70℃保存，室温存放越久越容易被内源性酶降解，造成提取困难。
匀浆处理:将组织在液氮中磨碎,每50-100mg组织加入1ml TRIzol。
不断加入液氮后，研钵温度过低，会使加入的TRIzol迅速冷冻为固体，所以要在TRIzol还是液体时迅速用研杵将组织粉末覆盖在TRIzol下面。然后用一次性手套轻轻覆盖，避免空气中的外源性酶对RNA降解。对于脏器中提取RNA，此时不建议大力研磨，待融化后轻轻搅拌直至液体清亮即可。
（提取脏器的RNA时证明，并非样品量越大RNA纯度越高得率越大，有文献表明样品量控制在80mg左右配合1mlTRIzol效果为最佳。但是对于肌肉和腺体中的RNA，可适当增加样品量，以提高得率和纯度。原因在于脏器的特殊功能及组织形态学，取样量过高也会含有大量的内源性RNA酶，提取过程中存在自身降解。其中，脾脏和肝脏中的特殊结构——脾索、血窦和肝索、肝静脉，所以在研磨样品时要加大力度，将组织彻底磨碎。同时，肝脏取样时尽量取肝小叶部分，远离静脉。脾脏，由于距离胰腺很近，故会残留大量RNA酶，造成提取困难。不仅如此，脾脏和肝脏均属于负责过滤血液的脏器，所以加入异丙醇以后出现的沉淀会出现淡黄色甚至是褐色，原因是血红素有残留，在最后溶解沉淀时要尽量将其全部溶解掉，或者可以将未溶解的部分除去。）
2．将匀浆样品在室温（15-30℃）放置5分钟，使核酸蛋白复合物完全分离。
步骤1、2的目的在于将组织细胞中的细胞器彻底裂解以释放RNA，同时其酸性条件可以将DNA和RNA分离。TRIzol中含有RNA酶抑制剂，可以保持RNA的完整性。TRIzol的加入也不是越多越好，诸多RNA提取技术贴对于RNA提取纯度不高的解释多为裂解液加入不足，裂解不充分而致。但，这并非导致RNA电泳条带不佳的关键步骤，建议视具体情况而定，取样量不十分多时加入1ml足以。
（第一次离心后注意观察离心管中品相，以固相和液相有明显界限为最佳。若在液相中出现明显絮状沉淀，建议增加离心时间。例如样品中含有较多蛋白质，脂肪，多糖或胞外物质（肌肉，植物结节部分等）可于2-8&#&g离心10分钟，取上清。离心得到的沉淀中包括细胞外膜，多糖，高分子量DNA，上清中含有RNA。处理脂肪组织时，上层有大量油脂应去除。取澄清的匀浆液进行下一步操作。取上清时，应尽量避免抽取到下面的固相物质，以免造成RNA污染。）
3. 每使用1ml
TRIzol加入0.2ml氯仿，剧烈振荡15秒，室温放置5分钟。
(脏器当中，尤其是肝脏，含有大量DNA，如果震荡不够充分，氯仿对样品的裂解不充分会导致DNA去除不彻底，影响最终电泳效果和RNA纯度。室温静置后会出现分层现象，颜色清亮者为佳。)
2-8&#&g离心15分钟。样品分为三层：底层为黄色有机相，上层为无色水相和一个中间层。RNA主要在水相中，水相体积约为所用TRIzol的60℅。
&进行上清液的抽提时应注意避免抽提到中间的蛋白层，对于脏器中提取RNA时建议抽提至200μl-300μl时即可，个别组织例如：肌肉、皮肤、腺体中提取时，可以抽提到400μl。将上清液转移至新的离心管以后，应注意观察上清液颜色，若颜色淡黄或者不够澄清，建议将步骤3、4重复一次，即二次乳化，以彻底除去蛋白。
把水相转移到新管中，如要分离DNA和蛋白质可保留有机相，进一步操作见后。用异丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1ml
TRIzol加入0.5ml异丙醇，室温放置10分钟。
2-8&#&g离心10分钟，离心前看不出RNA沉淀，离心后在管侧和管底出现胶状沉淀。移去上清。
7. 用75℅乙醇洗涤RNA沉淀。每使用1ml TRIzol至少加1ml
75℅乙醇。2-8℃不超过7500&g离心5分钟，弃上清。
该步骤中使用的75%乙醇，建议使用0.1%的DEPC水进行配制。
室温放置干燥或真空抽干RNA沉淀，大约晾5-10分钟即可，用RNA-free水溶解。
用微量移液枪轻轻弃去乙醇，使沉淀干燥。不要真空离心干燥，过于干燥会导致RNA的溶解性大大降低。同时，注意保持无酶环境，室温放置干燥时应尽量避免与空气接触。加入25-200μl无RNase的水，脏器中的RNA由于提取难度较大，得率较低，建议用20-25μl的RNA-free水溶解即可，其他组织可适当增加。目的是使提取出的RNA沉淀溶解，以便保存和进行后续试验。溶解沉淀时，可用移液枪反复吹打，或者用掌上简易离心机短暂离心加速溶解，不建议使用55-60℃孵育。（TAKARA公司赠送的RNA-free溶解效果被广泛认可，建议购买时多要赠品。）
注意事项：
1.从少量样品（1-10mg组织或102-104细胞）中提取RNA时可加入少许糖原或者胰蛋白酶以促进RNA沉淀和分离蛋白。例如加800ml
TRIzol匀浆样品，沉淀RNA前加5-10μg
RNase-free糖原。糖原会与RNA一同沉淀出来，糖原浓度不高于4mg/ml是不影响第一链的合成，也不影响PCR反应。
2．匀浆后加氯仿之前样品可以在-60至-70℃保存至少一个月。RNA沉淀可以保存于75%
酒精中2-8℃一星期以上或-5至-20℃一年以上。
3.步骤5以后RNA逐渐析出，并完全暴露，所以进行后续步骤时应该严格控制外源性酶的存在，应于提取环境中多多喷洒酒精，并用酒精棉球多次擦拭手套，避免造成RNA降解。建议RNA提取后马上进行电泳检测，不要反复于-80℃冻融，否则会造成RNA降解。
4.整个提取过程要尽量不说话，少走动，减少空气流动……等造成的外源性RNA酶对RNA的降解，提取时间要尽量缩短，提取环境保持20℃或以下恒温，环境温度不宜过高。提取过程中使用的研钵、研杵、枪头、EP管等要用DEPC稀释液浸泡过夜后，用蒸馏水洗净，其中研钵、研杵尽量迅速烘干，180℃快速烘干。而枪头、EP管等可以在85℃下烘干20分钟。研杵、研钵取出后应先用液氮预冷，或者置于-20℃冰箱中15分钟，使其温度下降。试验操作台应使用洁尔灭经常消毒，并配合75%酒精棉多次反复擦拭，防止研磨时喷溅出的样品残留在桌面，造成污染。（DEPC，有毒，强挥发性，气味芳香，避光、干燥保存。使用时要佩戴一次性手套，并避免其他试验用品的污染。01%的DEPC可以使RNA酶失活，这也是取样时应用0.1�PC稀释液浸泡的原因。）
5.建议每次提取样品的数量不要过多，否则会导致第一个提取的样品于环境中静置时间过长，影响提取质量。对于脏器中的RNA提取，每次1-4个为宜。
电泳检测：1%琼脂糖凝胶电泳，检测RNA完整性，观察18s、28s条带。
这里，RNA电泳要特别注意胶的浓度和质量。首先，浓度不宜过高，1%-1.2%为宜。其次，每次配胶不宜过多，最好现用现配，但是一次配100ml，3-5次可用完也可。溶胶时一定要溶解彻底并且均匀，否则倒胶时产生气泡，影响电泳效果。晾胶时，要以稍高于体温为佳，温度过高会导致胶体过软，给点样造成困难。倒胶时，注意胶的厚度，原则是宁厚勿薄，胶板过薄点样孔盛放不下点样量，样品溢出导致弥散。胶板如果很厚，一般要晾置20分钟以上，否则胶体晾置不彻底，拔掉梳子会破坏点样孔，同时胶体密度也会变得不均一，影响电泳效果。
对于RNA电泳，电泳液的要求也很高，最好每次都使用新的电泳液，因为RNA极易降解，所以不宜与其他电泳液混用。同时，要注意电泳液的配制，为1&TAE，如果电泳液配制有误则会导致电压不稳，或者电压无法上升。
最后，保证了电泳液和胶体质量以后，就可以进行点样了。点样时，要注意点样量，以3μl为宜，与loading-buffer混匀后要用移液枪将其完全吸取，完全点入点样孔内，不要有溢出，同时点样时力度不宜过大，否则会使枪头捅漏胶板，样品流入电泳液，导致电泳失败。
电泳条件，由于RNA自身易降解的特点，建议使用高电压，短时间电泳方式，130-140v电压，10-15分钟即可。电泳时间长短会影响带型的相对位置，所以不能单纯靠对比Marker来断定。
电泳时常出现的问题：
点样孔是亮的。原因可能是由于点样时力度大，捅破了胶板，造成样品残留在胶体内，无法跑开。
出现了四条带。原因是基因组残留，但是不影响整体RNA质量，判断RNA是否完整的标准就是28s和18s条带的存在。
一般最佳的电泳效果是28s的条带亮度是18s的二倍，同时18s与5s之间有朦胧弥散状拖尾，这是少量mRNA的存在。
去除基因组的方法也有很多，有专门的试剂盒。
3．当只有5s条带存在，并且拖尾严重，前两条带没有时，即为提取的RNA发生降解，此时，样品不可用，需要重新提取。
如果一条带都没有，则有可能是制胶有问题，注意要先将琼脂糖粉和1&TAE加热溶解混匀后，再向其中加入EB（EB，溴化乙锭，遇热、见光时容易分解）。否则EB遇热分解，也会导致电泳时跑不出条带。如果排除了胶体问题，样品本身则可能是最后一步沉淀未完全溶解，建议将样品彻底溶解后再跑一次。
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以上网友发言只代表其个人观点，不代表新浪网的观点或立场。如何选择正确的RNA提取方法_百度知道
如何选择正确的RNA提取方法
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　　1. 使用正确的细胞或组织储存条件　　在样品用液氮瞬间冻结之后，应该储存在-80°C，千万不能解冻。即使是置于含有胍盐的裂解液中作匀浆前的短暂解冻，也会导致RNA的降解和损失。瞬间冻结的组织应该首先在超低温条件下先研磨成粉，然后置于裂解液中进行匀浆。　　RNAfixer使样品储存更为便利。储存在RNAfixer中的细胞或组织可在室温下稳定保存长达1个星期，在4°C可稳定保存长达1个月，或永久保存在-20°C。　　2. 消除环境RNase的污染　　为了得到完整的、高品质RNA，在整个RNA制备过程中，当RNA离开强蛋白变性剂（如离液裂解液或酚）的保护时，避免引入新的RNase污染就非常关键。由于RNase几乎是无所不在，所以必须确保与纯化的RNA接触的每一样东西都是无RNase污染的。所有的表面，包括移液器、工作台、玻璃器皿和制胶设备，都必须用表面去污净化溶液如RNase喷雾清除剂 来处理过，去除各种溶液或者反应缓冲液中可能存在的RNase污染，可以用RNAsafe。必须保证一直使用无RNase的枪头、试管和溶液，手套也应经常更换。　　3.迅速灭活内源的RNA酶，以防止RNA降解。　　以下3个方法均可有效使内源RNA酶失活：　　1）、用含离液（如胍盐）的细胞裂解液收获样品，并立即匀浆。　　2）、用液氮瞬间冻结样品。值得特别注意的是：组织块必须保证足够小，在浸入液氮的瞬间就能冻结，以确保瞬间令RNA酶失活。　　3）、立即将样品置于RNAfixer无液氮RNA样品储存液中。它是一种水相、无毒的收集试剂，能立即稳定并保护完整、未冻结的组织和细胞样品中的RNA。关键要点是组织样品切片一定要够薄（&0.5 cm），这样RNAfixer才能在RNase破坏RNA之前迅速渗入组织块中。　　4. 选择合适破壁方法　　细胞或组织的彻底匀浆对RNA提取来说，是一个很关键的步骤，它能够防止RNA的损失和降解。匀浆的方法应根据细胞或组织的类型来选择。大部分培养的细胞可以置于细胞裂解液中，通过简单的涡旋震荡来匀浆；而动物组织、植物组织、酵母和细菌、真菌则常常需要更加剧烈的方法，通常用液氮研磨。比如说细菌（特别是革兰氏阳性菌）的细胞壁，就需要溶菌酶消化来实现彻底的细胞裂解和RNA的最大回收，酵母提取时加入破壁酶帮助破壁，再用TRIpure或RNApure进行提取。　　5. RNA提取少走弯路——不同材料如何选择最适RNA提取试剂　　现有众多的RNA分离方法也许令人难以取舍。目前最简单也是最安全的方法是柱式分离，如RNApure 因为操作简单，时间短，纯度高而受到大家的喜爱，RNApure不需要DNA酶消化DNA，节省了时间，避免RNA的降解，从而提高了产量；相对非柱式分离（如TRIzol），去除蛋白及其他杂质干净，提高了纯度，对于细胞、组织、一般植物均非常适合。植物RNA的提取比较难抉择，植物RNA提取受酚、多糖、蛋白杂质、次生代谢物含量的影响，一般用TRIzol提取纯度不高，而且很多植物用TRIzol提取不出来。　　这时候可以选择多糖多酚植物总RNA提取试剂盒（水仙、辣椒、胡萝卜、玉米、百合、小麦、西红柿、花菜、油菜等）和通用植物RNA提取试剂盒（适合绝大多数植物提取，包括：各种中草药、植物种子、苹果、葡萄、草莓、香蕉、龙眼、荔枝、草坪植物、松树、杉树、白桦、紫松果、彩叶草、一品红、夹竹桃、垂叶榕、紫罗兰、月季、天竺蓝、牵牛花等）；非常值得一提的是血液（包括血清、血浆、脑脊液、各种拭子或其他液体含量高的样本）RNA的提取用TRIzol和红细胞裂解的方法效果都不好，因为红细胞裂解液不含有RNA酶的抑制成分，这个过程RNA很容易降解，推荐使用TRIpure LS (RP1101)或者血液总RNA提取试剂盒（RP4001），该方法适用于表达谱芯片实验中RNA的提取。　　6. 低浓度RNA的沉淀　　纯化得到的RNA可能需要通过沉淀来浓缩，以满足一些下游应用的需要。醋酸铵(NH4OAc) 沉淀（加0.1体积的5M 醋酸铵、2-2.5体积的无水乙醇，-20°C放置25分钟以上）可以很好地回收RNA。如果需要定量回收低浓度的RNA（ng/ml），可以采用共沉淀（如linear acrylamide糖原glycogen,、酵母yeast RNA ）的方法。核酸助沉剂是linear acrylamide，当RNA用于RT-PCR分析时，线性的丙烯酰胺和DNase处理的糖原都可以作为理想的共沉淀剂，因为它们都不含DNA污染，糖原含量高会抑制PCR反应，应注意控制浓度，核酸助沉剂对PCR无影响，成为病毒核酸提取的首选。酵母RNA和未处理的糖原会给样品带来核酸污染，有可能影响RT-PCR的结果。沉淀后，注意避免RNA沉淀过分干燥，因为这可能导致很难重新溶解。　　7. 提取好的RNA如何储存　　如果只是短期储存，重悬的RNA应放置于-20°C；如果是长期储存的话，就应该放置于-80°C。储存RNA时，可以加入少量的RNA酶抑制剂（RP5601），避免RNA的降解，RNA可以直接做下游实验。如果要长期保存RNA，可以加入RNAlong。我们推荐将RNA溶液分装在几支管中。这会避免反复冻融损伤RNA，并预防偶然的RNase污染。
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- 技术说明10(1) 描述:描述Ambion的RNAlater(TM) Tissue Collection: RNA Stabilization Solution，该溶液可使研究人员在不破坏RNA完整性的情况下推迟数天、数周甚至数月后进行RNA提取。
- 技术说明14(4)
描述: 最新的TaqMan(R) PreAmp Cells-to-CT(TM) Kit将方便的Cells-to-CT裂解液、逆转录 (RT) 试剂与TaqMan PreAmp Master Mix相结合，可直接预扩增cDNA。
- 技术说明11(5)
描述: 使用我们全新的MagMAX(TM) Viral RNA Isolation Kit可以高效地从无细胞样品中提取病毒RNA。
- 技术说明8(3)
描述:期待多少产量。
- 技术说明11(3)
描述: 本文描述了使用若干种Ambion的miRNA分析产品分析人白细胞中的miRNA表达。
- 技术说明16(1)
描述: 本文我们讨论了从血液提取高质量RNA时所碰到的挑战以及现有的应对方法。
- 技术说明13(4)
描述: 本文描述的研究中使用了RNAlater(R) Solution来储存和稳定临床皮肤活检样品，以便通过RT-PCR和芯片技术进行基因表达分析。
- 技术说明14(3)
描述: 本文描述的优化实验方案能够可靠地通过实时RT-PCR对FFPE样品提取到的RNA进行mRNA表达水平定量。
- 技术说明8(2) 描述: RNAlater(TM)可以保存组织中的RNA，用于后续的组织学检测。
- 技术说明12(1) 描述: Ambion全新的LCM Staining Kit可使研究人员从冷冻、OCT包埋的组织中获得高质量的RNA。
- 技术说明9(1) 描述: 终于有一种可以从总RNA样品中提取细菌mRNA的试剂盒了。
-技术说明11(4)
描述: Ambion的RiboPure(TM)-Blood Kit操作步骤克服了从全血中提取完整RNA的困难。
纯化小RNA：使用成熟microRNA进行微阵列芯片分析-技术说明12(4) 描述: 通过使用flashPAGE(TM) Fractionator来改善miRNA微阵列芯片结果，以从总RNA样品中获得成熟miRNA。
- 技术说明15(1)
描述: 使用TaqMan(R) MicroRNA Cells-to-CT(TM) Kit可以快速、简便、灵敏地对培养细胞进行miRNA表达谱分析，并且无需纯化RNA。
- 技术说明14(4)
描述: Mouse RiboPure(TM)-Blood Kit可在时间过程研究中提取鼠尾静脉血样中的高质量总RNA，包括miRNA。提取后，可使用TaqMan(R) MicroRNA Assay进行microRNA的定量。
- 技术说明9(4)
描述: 优化RNA定量的小贴士。
- 技术说明14(3)
描述: 在研究人员评估培养细胞中的基因表达时，RNA提取可能是一个瓶颈。使用我们全新的TaqMan(R) Gene Expression Cells-to-CT Kit时，可以无需从培养的哺乳动物细胞中纯化RNA。
- 技术说明12(3)
描述: Ambion全新的RecoverAll(TM) Kit可使研究人员从FFPE样品中分离出DNA和/或RNA（包括microRNA）。所得到的核酸可用于各种下游应用，包括微阵列芯片分析、qRT-PCR和突变筛选等。
- 技术说明9(6)
描述: Ambion的RNAqueous(TM)-Micro Kit可以从4 - 400,000细胞中定量回收浓缩的RNA，并直接用于下游应用。
- 技术说明14(4)
描述: 用带有高比例球蛋白mRNA的总RNA进行芯片分析时，会减小信噪比，并增加信号变化。使用我们的GLOBINclear(TM) Whole Blood Globin Reduction Kit可以解决这个问题。
- 技术说明14(2) 描述: Applied Biosystems/Ambion开发了很多种从血样中提取RNA的方法，研究人员可根据项目的需求选择最合适的系统。
- 技术说明11(3) 描述: 使用Ambion的RNAqueous(R)-Micro Kit对从激光捕获显微切割样品中分离的RNA进行RT-PCR分析。
- 技术说明13(3)
描述: Ambion的Mouse RiboPure(TM)-Blood RNA Isolation Kit经过优化，可从0.5ml以内的小鼠或大鼠全血中直接获得最高产量的高质量总RNA。
- 技术说明8(1)
描述: 专门设计用于RT-PCR分析的Ambion RNA提取试剂盒的概述。
- 技术说明9(5) 描述: 介绍一种提取RNA且去除DNA的方法。
- 技术说明12(3)
描述:Ambion现可提供TRI Reagent(R)。该试剂可快速、简单和大规模地从生物样品中提取不含DNA的RNA、不含RNA的DNA和/或蛋白质。
- 技术说明12(4)
描述: 将组织储存在RNAlater(R)中，或在-80°C条件下快速冷冻储藏。2年半后两种情况下的RNA对比结果会如何？
- 技术说明13(3)
描述: Veridex LLC的科学家设计了一项研究来评估成对的肿瘤样品中基因表达谱的分析结果。他们发现保存在RNAlater(R)的组织与快速冷冻的组织中的RNA的产量和质量没有显著性差异。
- 技术说明11(4)
描述: 描述了关于RNAlater(R)的一些常见问题。RNAlater(R)是一种用于在新鲜组织和细胞样品的储存过程中保持RNA的完整性的溶液。
- 技术说明11(3)
描述: 从RNAlater稳定的样品中可以得到完好的蛋白质用于下游应用，如Western blot或二维凝胶电泳分析等。
- 技术说明9(5)
描述: 在样品处理过程中捕获基因表达的模式。
- 技术说明14(4)
描述: 加州大学尔湾分校的研究人员描述了使用RNAlater(R)溶液处理细胞后进行FACS的方法，该方法可以最大限度减少对下游分选细胞基因表达谱的破坏。
- 技术说明14(3)
描述: 日本大阪国立生物医学创新研究所的研究人员对一系列不同组织储存方法进行比较后，建议使用RNAlater(R)溶液来保存组织用于基因表达谱分析。
- &技术说明14(2)
描述: 本文描述了三个不同的研究团队如何使用RNAlater溶液保存样品用于微阵列芯片及RT-PCR研究。
- 技术说明 15(3)
描述:本文描述了使用RNAlater(R)溶液成功保存宫颈样品，用于人类乳突病毒（HPV）核酸分析。
- 技术说明 14(1)
描述: 这里我们在一篇近期论文概述边上摘录了2001年一篇关于RNAlater溶液在外太空使用的文章，文章描述了RNAlater溶液为国际空间站上进行的科学实验提供了何种便利。
- 技术说明 9(5)
描述: 使用MEGAscript 和MEGAclear从大量样品中合成和纯化高质量的RNA。
- 技术说明 11(3)
描述: 通过分析靶标mRNA和相关蛋白质的敲减来完全了解siRNA实验的结果。
- 技术说明2(3)
描述: 比较8个不同小鼠组织中总RNase的活性，并推荐最好的RNA提取方法。
- 技术说明 12(3)
描述: 使用Ambion全新的MagMAX(TM)-96 Blood RNA Isolation Kit可以轻松从全血或乳汁样品中提取病毒或样品的总RNA。
- 技术说明 13(2)
描述: 研究端粒DNA的研究人员发现，立即处理的组织和用RNAlater(R)保存的组织中端粒长度大致相同，而福尔马林固定的组织中端粒长度则长短不一。
- 技术公告#161
- 技术说明 14(3)
描述: 本文描述了使用Applied Biosystems产品对人类全血样品进行基因表达谱分析的一体化工作流程。
- 技术说明 10(2)
描述: RNAlater-ICE是一种独特的RNA稳定溶液，只需简单地将冷冻组织放入RNAlater-ICE就可以了！组织融化后不会有RNA降解风险。一旦融化，组织就可以像新鲜组织一样操作了。
—无处不在的RNAlater(R) - 技术说明 11(6)
描述: 简要描述了世界各地的研究人员如何使用RNAlater进行激动人心的研究。
描述: 本文描述了通过同时定量mRNA试验对三种冷冻组织处理方法的对比。
- 技术说明 12(2)
描述: 通过微阵列芯片研究试验来比较RiboPure(TM)-Blood Kit–RNAlater(R)和市场上先进系统在提取全血RNA的效果差异。
- 技术说明 15(3)
描述: 了解更多有关我们的新产品Power SYBR Green and Fast SYBR(R) Green Cells-to-CT(TM) Kit的信息。该产品可使您在从细胞培养到实时定量RT-PCR试验的过程中无需纯化RNA。
- 技术说明 12(3)
描述: 使用我们的Multi-Enzymatic Liquefaction of Tissue (MELT(TM)) Total RNA Isolation System时，第一步就是新鲜或冷冻组织的快速酶解——无需额外的研磨步骤。
描述:H. Lee Moffitt癌症中心和研究所（佛罗里达州坦帕市）的Yeatman实验室研究了结肠癌、乳腺癌和其他肿瘤中的基因表达特征。
描述: RNAlater(R)溶液提供了一种方法，可以保存组织用于大规模的实验，如检查烟草对气管基因表达的影响。
描述: 本文描述的研究显示，Ambion(R) LCM Staining Kit可以成功用于福尔马林固定石蜡包埋（FFPE）组织，且不会影响所提取RNA的产量或质量。
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